Dallam - a rádiófrekvenciás emelés, a fiatalítás és az ultrahangos kavitáció eljárása

Kémia

CuS04 + 2KOH = Cu (OH) 2 + K2SO4
önmagában egyszerű!

B Cu NO3 2.. Az ammónium-karbonátot egy NH4OH gyenge bázisa és egy gyenge sav H2CO3 képezi, kationos és anion hidrolízis alatt áll.. A döntés. A glicin olyan aminosav, amelynek karboxilcsoportja alkoholokkal észterezhető.

A vegyészek segítenek!

Kémia. Segítséget kérek.

Segíts a kémia számára

Α-Aminosav (glicin) reagálhat réz-hidroxiddal, hogy kék-lila erős komplexet képezzen, vízben oldódik:
Cu (OH) 2 + 2 NH2CH2COOH = [Cu (NH2CH2COO) 2] + 2H2O - reakció

C2H6C2H4H2C2H4H20C2H5OHC2H5OH CuO Cu CH3CHOH20 CH3CHO Ag2O2 Ag CH3COOH CH3COOHC12 HCI CH2ClCOOH CH2ClCOOH NH3.

Sürgősen segítsen a kémiai reakciókban.

1 reakció = HCOOH + CU2O + 2H2O, a 2 réz-hidroxid-együttható előtt
α-amino-ecetsav (glicin) reagálhat réz-hidroxiddal, hogy kék-lila erős komplexet képezzen, amely vízben oldódik:
Cu (OH) 2 + 2 NH2CH2COOH = [Cu (NH2CH2COO) 2] + 2H2O
A glükóz öt hidroxilcsoportot és egy aldehidcsoportot tartalmaz. Ezért az aldehid-alkoholra vonatkozik. Kémiai tulajdonságai hasonlítanak a poliasztikus alkoholokhoz és az aldehidekhez. A réz (II) -hidroxiddal végzett reakció a glükóz redukáló tulajdonságait mutatja. Adjunk hozzá néhány csepp réz (II) -szulfát-oldatot és egy lúgos oldatot glükózoldathoz. A réz-hidroxid csapadék nem képződik. A megoldás fényes kék színű. Ebben az esetben a glükóz feloldja a réz (II) -hidroxidot, és úgy viselkedik, mint egy többértékű alkohol. Melegítsük az oldatot. Az oldat színe változik. Először egy Cu2O-sárga csapadék, amely idővel nagyobb, vörös CuO-kristályokat képez. A glükóz glükonsavvá oxidálódik.
СН2ОН - (СНОН) 4 - СОН + Сu (ОН) 2 = СН2ОН - (СНОН) 4 - СОН + Сu2О ↓ + Н2О

5 2. Hidrokomplexek Zn OH 2 2OH g előállítása.. Chelates Int. A hatókör ciklikus. csoportok, beleértve az NH2CH2COOOH-amino-ecetsav-glicin M komplexképző szert, CuOH 2 2NH 2CH 2COOH Cu NH2-t.

Kémia, 10-11

Állítsa le a képeket az iphone használatával! Menj tanítani a kémia!

A glicin-amino-ecetsav H2NCH2COOH intenzív kék oldatot képez Cu2-vel.. CoCl2NH3H20 CoOHCICI NH4CI.

7.A, V.E.
Nem tudom helyesen, vagy nem. 2H 2SO 4 + Cu = So2gaz + CuSO4 + 2H20
C 2H 5OH + CuO = CH3CHO + Cu + H2O;
12 C2H5ON Úgy tűnik
Én sem akarok tovább gondolkodni

10-es kémiai ellenőrzési fokozat

Kémiai teszt

Alkénekhez A KMnO4 oxidációja 3C2H4 2KMnO4 4H2O 3C2H4OH 2 2Nn2 2KON.. savak CH2NH2-COOOH HCl ----- gt CH2NHClCOOH glicin-klorid 3-mal. A polikondenzáció P-I-je aminosavakból áll egymással, egy másodlagos felszabadulással.

Segítség a kémiai tésztában)))

Írja be az amino-ecetsav etánból történő előállításának reakcióit.

Segíts megoldani a kémiai tesztet

Van egy tankönyv Egorov? minden ott van.. minden válasz... túl lusta írni

1. A glicin a két anyag mindegyikével reagál. 1. Frissen készített Cu OH 2 csapadékot feloldunk, ha hozzáadjuk.

28) nátrium
25) 2-metil-propánsav
21) propanál (ha elsődleges alkohol), propanon (ha másodlagos)
3) karbonsav és aldehid
4) СН3СНО
5) ecetsav és metil-formiát
7) alkoholok
10) hangyas
11) Cu (OH) 2
12) propanál
14) réz-hidroxid (II)
15) zsírok lúgos hidrolízise
17) keton
18) hidratálás

http://sensie.ru/helping/glicin_cu_oh_2.html

NH2-CH2-COOH + Ba (OH) 2 →
mi történik ??

Időt takaríthat meg, és nem látja a hirdetéseket a Knowledge Plus szolgáltatással

Időt takaríthat meg, és nem látja a hirdetéseket a Knowledge Plus szolgáltatással

A válasz

Ellenőrzött egy szakértő

A válasz adott

főleg

2NH2CH2COOH + Ba (OH) 2 → (NH2CH2COO) 2Ba + 2H2O

Amino-ecetsav + bárium-hidroxid → bárium-amino-acetát + víz.

Csatlakozzon a Knowledge Plus-hoz, hogy elérje a válaszokat. Gyorsan, reklám és szünet nélkül!

Ne hagyja ki a fontosakat - csatlakoztassa a Knowledge Plus-t, hogy a választ most láthassa.

Nézze meg a videót a válasz eléréséhez

Ó, nem!
A válaszmegtekintések véget érnek

Csatlakozzon a Knowledge Plus-hoz, hogy elérje a válaszokat. Gyorsan, reklám és szünet nélkül!

Ne hagyja ki a fontosakat - csatlakoztassa a Knowledge Plus-t, hogy a választ most láthassa.

http://znanija.com/task/12675594

Glycine cu oh 2

Csoport: Felhasználók
Üzenetek: 15
Regisztráció: 2009. november 8.
Feladó: tornaterem

1. A metilamin kémiai tulajdonságai?
2. Az anilin kémiai tulajdonságai?

1. anilin + víz =?
2. anilin + HCL = termék
3. termék + NaOH =?
4. kvalitatív reakció anilin
5. glicin + víz =?
6. glicin + litmus =?
(magyarázza el az észrevételeket)
7. glicin + Mg =?
(magyarázza el az észrevételeket)
8. glicin + Cu (OH) 2 =?
(magyarázza el az észrevételeket)

Most az internetet kikapcsoltam (adósság), és sürgősen írnom kell

A hozzászólás szerkesztveP Pretty - 7.5.2010, 21:53

Csoport: Felhasználók
Üzenetek: 621
Regisztráció: 2008.07.07
Feladó: Alphons Telecom

8 - a csapadék vékony, és mindent fényes kék lesz a komplexum számára

Csoport: Felhasználók
Üzenetek: 15
Regisztráció: 2009. november 8.
Feladó: tornaterem

8 - a csapadék vékony, és mindent fényes kék lesz a komplexum számára

Nagyon köszönöm, soha nem gondoltad, hogy ilyen emberek léteznek.
Ph az Ön benzolgyűrűje, csak ez az első alkalom, hogy látok ilyen jelölést?

A hozzászólás szerkesztveP Pretty - 7.5.2010, 22:07

Csoport: Felhasználók
Üzenetek: 621
Regisztráció: 2008.07.07
Feladó: Alphons Telecom

Csoport: Felhasználók
Üzenetek: 15
Regisztráció: 2009. november 8.
Feladó: tornaterem

Megtalálták volna, és ezért megfordult))

A hozzászólás szerkesztettP Pretty - 7.5.2010, 22:20

Csoport: Felhasználók
Üzenetek: 693
Regisztráció: 2009.07.12

Égünk csak vár

Csoport: Felhasználók
Üzenetek: 1 534
Regisztráció: 2009.3.3
Feladó: Hua Hin

1. A metilamin kémiai tulajdonságai?
A metil-amin (CH3NH2) színtelen ammónia-szerű gáz, és forraljuk 6,32 ° C-on. Peszticidek, gyógyszerek, színezékek szintézisére használatos. A legfontosabb termékek az N-metil-2-pirrolidon (NMP), a metil-formamid, a koffein, az efedrin és az N, N'-dimetil-karbamid.

A metil-amin egy tipikus primer amin. A metil-amin sókat képez savakkal. Az aldehidek és acetálok reakciói Schiff-bázisokhoz vezetnek. Az észterekkel vagy acil-kloridokkal való kölcsönhatás során amidokat kap.

Általában oldatok formájában alkalmazzuk: 40 tömeg% vízben, metanolban, etanolban vagy THF-ben.
pontosabban

A közös f-ly (CH3) xNH3-x metilaminok, mono-, di- és trimetilaminok, ahol. x = 1,2 és 3. Bestsv. erős ammónia-szagú gázok (lásd a lapot); nagy hígítás esetén a tri-metil-amin heringszagot tartalmaz. Jó sol. vízben, etanolban stb. p-celeration.

A metil-aminszármazékok megtalálhatók a coca cserje leveleiben, az alvó mák éretlen gyümölcsében és más növényekben, állati szövetekben. A hering sóoldat illata a trimetil-amin jelenlétének köszönhető, amelyet a holin és a betain baktériumok által történő bomlása okoz.

A metil-aminok erős bázisok. Bányászral. K-Tami válságot képez. só. mono-, di- és trimetil-aminok hidrokloridjai (olvadáspont: 225-226, 171 és 277 ° C), hidrobromidok (olvadáspont: 250-251, 133,5 és 244 ° C). Amikor az interakció. karboxil-tami-val (megemelt t-rahon), ezek anhidridjei, klór-anhidridjei, mono- és dimetilaminok észterei átalakulnak. N-metil- és N, N-dimetil-amidokban-t-ig. A monometil-amint alkoholokkal és alkil-halogenidekkel alkilezzük, hogy másodlagos és tercier alkil-aminokat kapjunk; di-metil-amin - M, N-dimetil-alkil-aminok; trimetilamin - kvaterner ammóniumsók (alkil-halogenidekből). A mono- és dimetil-aminokat etilén-oxiddal reagáltatva N-metiletanol-amint vagy N-metil-di-etanol-amint és M, M-di-metil-etanol-amint alakítunk át, foszgénnel kezelve. metil-izocianátban és tetrametil-karbamidban, a CS2 hatásával a jelenlétében. p-ra NaOH-s Na-sókban. metil- és dimetil-ditiokarbamin-készlet; ugyanakkor a monometil-amin jelenlétében. a nehézfémsók metil-izotiocianátot képeznek (metil-mustárolaj). Amikor az interakció. g-butirolaktonnal monometil-aminnal N-metil-pirrolidont kapunk kloroformmal. alkálifém-metilzonitril, HNO2-metanol és N2 (kvantitatív).

Amikor a HNO2-t feldolgozzuk, a dimetil-amin belép a Mannich p-helyre, és N-nitrozodimetil-aminná alakul. A trimetil-aminból H2O2 vagy más oxidálószer hatására N-oxidot kapunk (olvadáspont: 208 ° C), ha halogénnel - például komplex sókkal - kezeljük. [(CH3) 3N + Br] Br-; amikor az etilén-oxid trimetil-amin-hidrokloridra hat, kolin-klorid [(CH3) 3NCH2CH2OH] Cr képződik.

A metil-aminok prom-sti keverékében gőz-katalitikus. metanolos aminálással 350–450 ° C-on és 0,6–5,0 MPa-nál, az NH3: CH3OH = 1,5–6 mólaránya (dehidratáló kat. –Al203, Al2O3-SiO2 vagy mások). A metanol konverzió majdnem 100%; 93-98 mol% metilaminok kibocsátása. A metil-amin-keverék összetételét az NH3 mennyisége, az m-es eljárás és az egy vagy két metilamin újrahasznosítási iránya szabályozza. A kapott metil-aminok, H2O, NH3 és metanol-maradékok elegyét 0,4-1,8 MPa nyomáson végzett desztillálással elválasztjuk, így a legalább 99,2% főanyag-tartalmú metil-aminokat kapjuk. A metil-aminokat cseppfolyósított állapotban vagy 25% -os vizes oldatok formájában állítjuk elő.

A preparatív módon előállított metil-aminokat az alifás csoportokra jellemző eljárásokkal szintetizáljuk. aminok, valamint CH2O NH4CI-vel való melegítése, hidrogén-cianid hidrogénezése, ammónium-dimetil-éter vagy redukálás. a szénhidrogének 300-420 ° C-on és 7-30 MPa-on történő aminálásával (cat-Zn / Al2O3, Cu-Zn / Cr2O3):

A di- és trimetil-aminok keveréke nélküli monometil-amint Gabriel és Hoffmann közleményeiből nyerjük; dimetilamin - kölcsönös konc. p-ra alkáli-n-nitrozodimetil-anilin, trimetilamin-therm. kvaterner ammóniumsók bomlása.

A metil-aminokat a vizes oldatok GLC-vel és bálna titrálásával analizáljuk. A levegőben GLC-vel vagy kolorimetriával határozzuk meg. 2,4-dinitroklór-benzol (mono- és dimetil-amin) és o-nitrofenol (trimetil-amin).

Metil- és dimetil-aminokat használnak rovarirtók (Sevin, Shradan, stb.), P-reaktorok (pl. N-metil-pirrolidon, DMF, dimetil-acetamid) előállítására, lek. in-in (kokain, promedol, teofillin, koffein, stb.), felületaktív anyag. A metil-amint is használják talaj sterilizátorok (például Na N-metil-ditiokarbamát), B (tetril stb.), Színezékek, fényképészeti anyagok (metol) előállítására; dimetil-amin - rakéta-üzemanyag (N, N-dimetil-hidrazin), vulkanizációs gyorsítók és fungicidek (Zn-dimetil-ditiokarbamát, tetrametil-tiuram-diszulfid), korróziógátlók, baktericidek, kenőanyag-adalékok bőrbőr feldolgozásához; trimetilamin - kolin-klorid, kolin, kvaterner ammóniumsók, ioncserélő gyanták előállítása, lek. in-ben.

A metil-aminok tűz- és robbanásveszélyesek: m. Öngyulladás. 430, 402 és 190 ° C, CPV 4,9–20,8, 2,8–14,4 és 2,0–11,6%. mono-, di- és trimetilaminok esetében. Nagy koncentrációban káros hatásuk van az idegrendszerre, a májra és a vesére; irritálja a szem nyálkahártyáit és a felső légzőrendszert. módon; MPC 1 mg / m3 (mono- és dimetilaminok), 5 mg / m3 (trimetil-amin).

http://s125.ru/forum/index.php?showtopic=19115

A szerves és szervetlen vegyületek tulajdonságainak összehasonlítása

Tapasztalat 1. A sók képződése szerves és szervetlen bázisok és savak kölcsönhatásával, kísérletek velük.
Munka teljesítménye:
Keverjük össze 2 csepp anilint és egy kis vizet, anilin emulziót kapunk. Egy másik csőbe néhány CuSO-t öntenek.₄ rázás közben cseppenként hozzáadtunk NaOH-t, és egy Cu (OH) kék csapadékot kaptunk₂.
Koncentrált HCI-t csepegtetünk mindkét csőbe. Figyelje meg az emulzió és az üledék feloldódását.

Cu (OH)₂ + 2HCI → CuCl₂ + 2H₂O
A kapott oldatokhoz cseppenként hozzáadunk NaOH koncentrált oldatot, a csapadék ismét kicsapódik.

CuCl₂ + 2NaOH → Cu (OH)₂↓ + 2NaCl
Következtetés: a szerves és szervetlen bázisok és sók hasonló tulajdonságokkal rendelkeznek.

Tapasztalat 2. Az észterek beszerzése a szerves és szervetlen savak alkoholokkal való kölcsönhatásával.
a). Egy kis izoamil-alkoholt és tömény ecetsavat öntünk a csőbe, és kis koncentrált kénsavat adunk hozzá. Az elegyet vízfürdőben keverjük és melegítjük. Figyelje meg a folyadék sárgulását. A keveréket lehűtöttük, az éter a felszínre összegyűlt, a körte esszenciáját érezzük.

b) A bórsav több kristályát porcelán edénybe helyezzük, és néhány etanolt adunk hozzá. A keveréket kevertük, és megvilágított kis foltot hoztak. A kapott anyagot zöld lánggal égetjük.

2B (OS₂H₅)₃ + 18O₂ → Be₂Oh₃ + 12SO₂ + 15H₂Oh
Következtetés: A szerves és szervetlen savak hasonló kémiai tulajdonságokkal rendelkeznek.

Tapasztalat 3. Amfoter cink-hidroxid és amino-ecetsav.
a) Kicsit cink-nitrát oldatot öntsünk két vizsgálati csőbe, és cseppenként hozzá kell adni NaOH-oldatot, mielőtt kicsapódna. Ezután HCI-oldatot öntöttünk egy csőbe, és egy másik NaOH-oldatot öntöttünk egy másikba. mindkét csőben oldott üledékek.
Zn (NO₃)₂ + 2NaOH Zn (OH)₂↓ + 2NaNO₃
Zn (OH)₂ + 2HCI ↔ ZnCl₂ + 2H2O
Zn (OH)₂ + 2NaOH ↔ Na₂[Zn (OH)₄]
b) Egy kis nátrium-karbonát-oldatot öntünk a csőbe, és egy kis glicint küldünk a csőbe. Figyelje meg a gázbuborékok felszabadulását₂. A glicin savas tulajdonságait mutatja. Számos glicin kristályt helyeztünk egy kémcsőbe, és koncentrált sósavval megnedvesítettük. A csövet melegítettük. Figyelje meg a glicin oldódását. Helyezzünk egy csepp kapott oldatot egy üveglemezre. Hűtés után megfigyeljük a kristályok képződését, amelyek alakja különböző a glicin kristályoktól.

Következtetés: Az amfoter vegyületek szerves és szervetlen kémia formájában is léteznek, és hasonló tulajdonságokkal rendelkeznek.

Tapasztalat 4. A só tulajdonságainak összehasonlítása.
Munka teljesítménye:
a) Két kémcsőben kis mennyiségű ólom-nitrát és acetát oldatot öntünk. Ezután minden csőbe KI-oldatot adunk. Figyelje meg a PbI kicsapódását₂.
Pb (NO₃)₂ + 2KI ↔ PbI₂↓ + 2KNO₃
(CH₃COO)₂Pb 2KI b PbI2 ↓ + 2CH3COOK
b) Két kémcsőben kis mennyiségű réz (I) -szulfát- és anilin-sóoldatot öntünk. Mindkét csőbe koncentrált NaOH-oldatot adunk. A csapadék megfigyelése:
CuSO₄ + 2NaOH u Cu (OH)₂↓ + Na₂SO₄

Következtetés: mind a szerves, mind a szervetlen sók hasonló tulajdonságokkal rendelkeznek.

http://buzani.ru/component/content/article?id=670:glava-6-khimicheskij-praktikum-rabota-3

Tapasztalat 3. A glicin rézsójának kialakulása

AMINOK-savak és folyadékok

A munka célja. Ellenőrizze az aminosavak és fehérjék amfoter jellegét, elsajátítsák a fehérjék kvalitatív (szín) reakcióit az elsődleges struktúra (aminosavak típusai) előrejelzéséhez.

Tapasztalat 1. A glicin amfoter tulajdonságainak igazolása

1.1. Egy teljes vízcsőbe helyezzen egy 0,002 n-es cseppet. H₂SO₄ és egy csepp metil-narancsot (keverjük). A kapott rózsaszín oldatot két csőbe osztjuk. A savas oldattal ellátott csövek egyikében adjunk hozzá egy spatulát száraz glicint. Hasonlítsa össze a színes megoldásokat.

1.2. Tegyünk egy csepp 0,005 N NaOH-t és egy csepp fenolftaleint (keverjük) a teljes vízcsőbe. A kapott színes (lúgos) oldatot két csőbe osztjuk. A lúgos oldattal ellátott csövek egyikében adjunk hozzá egy spatulát száraz glicint. Hasonlítsa össze a színes megoldásokat.

Írjon reakciókat, amelyek magyarázzák a mutatók színeinek változásait.

2. tapasztalat

Az aminosavak, mint a primer aminok, kölcsönhatásba lépnek a nitrogénsavval₂ nitrogén kibocsátással - ezt a reakciót az aminosavak kvantitatív meghatározására használjuk (mintavétel: N₂).

1 ml 10% -os glicinhez hozzáadunk néhány NaNO kristályt₂ és 0,5 ml 0,5 n. HCI. Az injekciós üveg rázása N kiválasztást mutat.₂ kis buborékok formájában (nedves vörös lakmus használatával győződjön meg róla, hogy nem NH₃).

Írja le a reakcióegyenleteket.

Tapasztalat 3. A glicin rézsójának kialakulása

A száraz csőbe 0,5 g CuCO-t adunk.₃ és 1,5-2 ml 2% -os glicinoldatot. A keveréket szellőztető lámpa lángján melegítjük - megjelenik az oldat kék színe. Az oldat egy részét egy másik csőbe öntjük, és 2 csepp 10% -os nátrium-hidroxid-oldatot adunk hozzá. Van csapadék? Adjon magyarázatot.

Az oldat többi részét egy pohár jeges vízzel hűtjük. A kristályok fokozatosan kiesnek az amino-ecetsav rézsójának oldatából, amelyet nehéz feloldani:

A komplex kék színű rézsók képződése az a-aminosavakra jellemző.

Hozzáadás dátuma: 2015-08-13; megtekintés: 619 | Szerzői jog megsértése

http://mybiblioteka.su/6-77298.html

35. Nitrogén tartalmú szerves anyag

A nitrogéntartalmú szerves vegyületek jellegzetes kémiai tulajdonságai: aminok és aminosavak; Biológiailag fontos anyagok: zsírok, szénhidrátok (monoszacharidok, diszacharidok, poliszacharidok), fehérjék.

1. Mind az anilin, mind a dimetilamin reagál

3) kénsav

5) nátrium-hidroxid

6) kálium-permanganát oldat

2. Reagál amino-ecetsavval

4) nátrium-szulfát

5) nátrium-hidroxid

6) réz (II) -hidroxid

3. A glicinről elmondható, hogy ez az anyag

1) normál körülmények között folyadék

2) amfoter tulajdonságokkal rendelkezik

3) csípős szaga van

4) vízben jól oldódik

5) észtereket képez

6) nem reagál savakkal

4. Az anilinről elmondható, hogy ez az anyag

1) erősebb bázis, mint az ammónia

2) vízben jól oldódik

3) savakkal reagáltatva sókat képez

4) levegőben oxidálódik

5) lúgokkal reagál

6) a brómvíz elszíneződése

5. kölcsönhatásba lép a metil-aminnal

1) ammónium-ezüst-oxid oldat

2) foszforsav

3) kálium-hidroxid

6. A fenil-ammónium-kloridról azt mondhatjuk, hogy ez az anyag

1) molekuláris szerkezete van

2) a brómvíz elszíneződése

3) reakcióba lép a sósavval

4) kölcsönhatásba lép a lúgokkal

5) vízben jól oldódik

6) erős bázis

7. kölcsönhatásba lép nátrium-hidroxid-oldattal

6) metil-ammónium-klorid

8. A metilaminról elmondható, hogy ez az anyag

1) normál körülmények között gázhalmazállapotú

2) reagál az "ezüst tükörre"

3) nem ég a levegőben

4) erősebb bázis, mint az ammónia

5) sót képez hidrogén-kloriddal

6) nem oldódik vízben

9. Mind az anilin, mind a metilamin reagál

4) salétromsav

5) kálium-hidroxid

6) ammónium-ezüst-oxid oldat

10. A dimetilaminról elmondható, hogy ez az anyag

1) ég a levegőben

2) vízben jól oldódik

3) nem molekuláris szerkezete van

4) erősebb bázis, mint az anilin

5) reagál az "ezüst tükörre"

6) reakcióba lép a lúgokkal, hogy sókat képezzenek

11. Az etil-amin kölcsönhatásba lép

3) salétromsav

12. A metiletil-amin kölcsönhatásba lép

2) hidrogén-bromid

4) kálium-hidroxid

13. Az etil-amin kölcsönhatásba lép

14. Az anilin kölcsönhatásba lép

1) nátrium-hidroxid

2) brómvíz

1) sajátos szaga van

2) tercier aminokat jelent

3) szobahőmérsékleten folyékony

4) tartalmaz egy nitrogénatomot egy egyedülálló elektronpárral

5) reagál savakkal

6) gyengébb bázis, mint az ammónia

16. A dimetilamin kölcsönhatásba lép

1) bárium-hidroxid

3) réz-oxid (P)

5) ecetsav

17. A propilamin kölcsönhatásba lép

2) hangyasav

18. A metil-amin kölcsönhatásba lép

2) hidrogén-bromid

4) kálium-hidroxil

19. A metil-amin az interakcióval nyerhető

20. Az etil-amin az anyagok kölcsönhatásából származik:

21. Az amino-ecetsav kölcsönhatásba lép

1) kalcium-oxid

22. És metil-amin és fenil-amin

1) vízben jól oldódik

2) erősen lúgos vizes oldat

3) reagáljon salétromsavval

4) kölcsönhatásba lép a Ca (OH) -val ₂

5) éget oxigén atmoszférában

6) primer aminokhoz tartoznak

23. Szinte semleges környezetben van vizes oldat:

24. A fenolftalein megváltoztatja az oldat színét.

25. Aminosavval reagáltatva:

2) nátrium-hidroxid

3) kálium-permanganát

1) szilárd anyag

2) vízben oldódik

A 3. ábrán primer aminokat értünk

4) kölcsönhatásba lép a kénsavval

5) nátrium-kloriddal kölcsönhatásba lép

6) kölcsönhatásba lép a klór-metánnal

27. Az Alanin kölcsönhatásba lép

28. Amino-ecetsav reagál

2) nátrium-hidroxid

3) kálium-permanganát

29. Aminosav-ecetsav vizes oldata kölcsönhatásba lép

http://maratakm.narod.ru/index2.files/b8.htm

A kémiai vizsga megoldási lehetőségei

2. rész

B1. Meg kell határozni a szervetlen vegyület neve és az osztály között, amelyhez tartozik.

A döntés. A szén-monoxid a CO képletnek felel meg - ez egy oxid. Márvány - kalcium-karbonát CaCO₃ - középső só. Szódabikarbóna - nátrium-hidrogén-karbonát NaHCO₃ - savanyú sót. Laza mész - kalcium-hidroxid Ca (OH)₂ - bázis (lúg). Válassza ki a kívánt beállításokat:

B2. Meg kell határozni a só képlet és a króm oxidációs állapota közötti összefüggést.

A döntés. Számítsuk ki az ezekben a vegyületekben lévő króm oxidálódásának mértékét az elektroneutrális állapot alapján (oxigén-oxidáció, -2-es, fluor-1, hidrogén +1, kálium +1, kalcium és bárium +2, króm x):
K₂CrO₄: 2 (+1) + x + 4 (-2) = 0, x = +6
CACR₂O₇: 1 (+2) + 2x + 7 (-2) = 0, x = +6
CrO₂F₂: x + 2 (-2) + 2 (-1) = 0, x = +6
Ba₃[Cr (OH)₆]₂: 3 (+2) + 2x + 12 (-2) + 12 (+1) = 0, x = +3
Összehasonlítva a lehetséges beállításokat, megkapjuk a választ:

B3. Határozzuk meg az anyag képlete és a katódon felszabaduló termék közötti összhangot az anyag vizes oldatának elektrolízise során.

A döntés. A vizes oldatok elektrolízise során a titán bal oldalán lévő feszültségtartományban lévő fémkationok nem állnak helyre a katódon, csak a víz csökken és a hidrogén a katódon szabadul fel. Ha a fém a titán és a hidrogén közötti feszültségsorozatban van, akkor a fémkation és a víz naprakész csökkenése következik be, és mind a fém, mind a hidrogén szabadul fel a katódon. Végül, ha a fém a hidrogéntől jobbra van, csak fémkationok redukálódnak és a fém a katódon szabadul fel. nitrit₃: nátrium a titán bal oldalán, ezért csak a katódon lévő hidrogén. Cu (NO₃): réz a hidrogén jobb oldalán, csak a fém RbHCO a katódon₃: A rubidium a titán bal oldalán van, ezért a hidrogén csak a katódon van. ón₂ : ón a titán és a hidrogén között, a katódon és a fémen, és a hidrogén.

B4. Meg kell határozni a só neve és a hidrolízis kapacitása közötti megfelelést.

A döntés. Cézium-szulfid Cs₂Az S-t egy erős bázissal és egy gyenge savval képezzük₂S anion által hidrolizált:
Cs₂S 2Cs + + S 2- - só disszociáció
S 2- + H₂O HS - + OH - - hidrolízis
A bárium-nitrátot egy erős Ba (OH) bázis képezi.₂ és erős sav HNO₃, a hidrolízis nincs kitéve.
A nátrium-szulfátot erős nátrium-hidroxid és egy erős sav H képződik₂SO₄, a hidrolízis nincs kitéve.
Az ammónium-karbonátot egy NH gyenge bázisa képezi₄OH és gyenge sav H₂CO₃, kationos és anion hidrolízisnek vetik alá.
(NH₄)₂CO₃ 2NH₄ + + CO₃ 2- - só disszociáció
NH₄ + + H₂O nh₄HE + H + - kation hidrolízis
CO₃ 2- + H₂O hco₃ - + OH - - anion hidrolízis
H + + HE - = H₂O - a környezet nem lehet savas és lúgos.

B5. Meg kell határozni a kiindulási anyagok és a kölcsönhatásuk fő terméke közötti kapcsolatot.

A döntés. Az alumínium-hidroxid kölcsönhatásában a Me alkotórészek alkáli-hidroxi-alumínium-oldatai képződnek.₃[Al (OH)₆], ahol Me egy alkálifém, és a MeAlO összetétel fúziós metaaluminátjai alatt₂. A metanolokat úgy is előállíthatjuk, hogy alumínium-hidroxidot alkálifém-karbonátokkal fuzionálunk.

B6. Az interakció radikális mechanizmuson keresztül megy végbe.
1) propén és bróm víz
2) propén és hidrogén-bromid
3) propén és klór (vizes oldatban)
4) propén és klór (500 o C-on)
5) etán és oxigén
6) metán és klór

A döntés. A propén és a bróm víz kölcsönhatása az elektrofil kötés reakciója, ugyanez igaz a szonda és a hidrogén-bromid közötti kölcsönhatásra. A propén vizes oldatban klórt is tartalmaz egy ionos mechanizmus segítségével. A klórral 500 ° C-on lévő propén egy radikális szubsztitúciós reakció, az etánt oxigénnel oxidálja egy radikális mechanizmus is, az utóbbi reakció is radikális. Az utolsó három válasz megfelelő.

B7. A reakcióban megfelelő körülmények között a metanolt nyerhetjük
1) CH₃ONa + H₂O
2) CH₄ + H₂O
3) HCCI₃ + KOH
4) HCOH + H₂
5) CO + H₂
6) CH₃Cl + O₂ + H₂

A döntés. A metanolt nátrium-metilát (1. számú) hidrolízisével állítjuk elő, a formaldehid hidrogénnel történő redukálásával (2. számú módszer a metanol ipari termelésének egyik lehetősége) és szén-monoxid és hidrogén keverékéből szintetizálva, ezt a keveréket „szintézisgáznak” nevezzük (5. sz. metanol ipari termelése).

B8. A glicin észterezett
1) propanol-1
2) propanol-2
3) ecetsav
4) magnézium-oxid
5) etil-alkohol
6) fém kalcium

A döntés. A glicin olyan aminosav, amelynek karboxilcsoportja alkoholokkal észterezhető. Ezért a glicin-észterezéssel reagáltathatjuk a propanol-1-gyel (1. lista a listában), a propanol-2 (2. sz.) És az etanol (5. számú).

B9. Ha 1 kg 10% -os kálium-klorid-oldatot 3 kg 15% -os sóoldattal keverünk össze, akkor oldatot kapunk, amelynek KCl tömegaránya _________%.

A döntés. A keverés után kapott oldat tömege megegyezik a kiindulási oldatok tömegének összegével, azaz a keverék tömegével. 1 kg + 3 kg = 4 kg = 4000 g. A kapott oldatban lévő kálium-klorid tömege szintén megegyezik a KCl tömegének összegével a kezdeti oldatban: az elsőben 1000 g * 0,1 = 100 g, a második - 3000 g * 0,15 = 450 g, a kapott 100 g + 450 g = 550 g mennyiségben találtuk a kálium-klorid tömegarányát a kapott oldatban: 550 g / 4000 g = 0,1375, vagy a probléma pontosságához kerekítve 0,138. A százalékos arány 13,8%. A válasz: 13,8%

B10. A 35 g foszfid-kalcium hidrolízise során felszabaduló foszfin mennyisége, amely 4% szennyeződést tartalmaz, __________ (n).

A döntés. Írjuk a reakciót:
Ca₃P₂ + 6H₂O = 2PH₃ + 3Sa (OH)₂
Számítsa ki a tiszta kalcium-foszfid tömegét. Ha a szennyeződések tömege 4%, akkor a kalcium-foszfid 100% - 4% = 96% vagy 0,96. Ezután m (Ca₃P₂) = 35 g * 0,96 = 33,6 g, az n anyag mennyisége (Ca₃P₂= 33,6 / 182 = 0,185 mol (moláris Ca tömeg₃P₂ 182 g / mol). A reakcióegyenlet szerint egy mól kalcium-foszfid két mól foszfint eredményez, 0,185 mol, 0,37 mol. Megtaláljuk a foszfin térfogatát, megszorozva az anyag mennyiségét a gáz moláris mennyiségével N: V (PH₃) = 0,37 * 22,4 = 8,27 l, vagy a szükséges válasz pontosságához kerekítve, 8 l.

http://www.chem03.ru/index.php?id=151

Az aminosavak, peptidek, fehérjék minőségi reakciói

Az aminosavak színreakcióval detektálhatók: ninhidrin, xanthoprotein, Foll, Milon, biuret minták stb. Ezek a reakciók nem specifikusak, mert az aminosavak szerkezetében lévő egyes fragmensek kimutatásán alapul, amelyek más vegyületekben előfordulhatnak.

Ninhidrin reakció, színreakció, aminosavak, aminosavak és aminok kvalitatív és mennyiségi meghatározására. A ninhidrin lúgos környezetében (triketohidrin-ninhidrát, C) melegítve₉H_bOh₄) elsődleges aminocsoportokkal rendelkező anyagokkal (-NH₂) egy olyan termék képződik, amely stabil, intenzív kék-lila színnel rendelkezik, maximális felszívódása körülbelül 570 nm. Mivel az ilyen hullámhosszon való felszívódás lineárisan függ a szabad aminocsoportok számától, a ninhidrin reakció alapja volt a mennyiségi meghatározásnak kolorimetriával vagy spektrofotometriával. Ezt a reakciót használjuk a szekunder aminocsoportok (> NH) meghatározására a prolin és a hidroxi-prolin aminosavaiban; ebben az esetben fényes sárga termék keletkezik. Érzékenység - 0,01% -ig. A modern automatikus aminosav-analízist az aminosavak ioncserélő szétválasztásának és kvantitatív meghatározásának kombinálásával végezzük ninhidrin reakcióval. Az aminosavak keverékeinek papírkromatográfiával való elválasztásakor minden aminosavat legalább 2–5 μg mennyiségben lehet meghatározni.

A szín intenzitása az aminosavak mennyiségének megítéléséhez használható.

Ez a reakció nemcsak szabad aminosavakkal, hanem peptidekkel, fehérjékkel stb.

A xantoprotein reakció lehetővé teszi az aromás aminosavak (fenilalanin, tirozin, hisztidin, triptofán) kimutatását az aromás mag elektrofil szubsztitúciójának reakciója alapján (nitrálás).

Koncentrált salétromsav hatására, például tirozin hatására sárga színű termék keletkezik.

Reakcióhiba. Ez a ciszteinre és a cisztinre adott reakció. Az alkáli hidrolízis során a ciszteinben és a ciszteinben a „gyengén kötődő kén” meglehetősen könnyen leválasztható, ami hidrogén-szulfid képződését eredményezi, amely lúgokkal reagáltatva nátrium- vagy kálium-szulfidokat termel. Ha ólom (II) -acetátot adunk hozzá, az ólom (II) -szulfid csapadék színe szürke-fekete.

A tapasztalat leírása. A csőbe 1 ml cisztinoldatot öntünk, hozzáadunk 0,5 ml 20% -os nátrium-hidroxid-oldatot. Az elegyet forrásig melegítjük, majd 0,5 ml ólom (II) -acetát-oldatot adunk hozzá. Szürke-fekete ólom (II) -szulfid csapadék figyelhető meg:

Zimmerman reakció. Ez egy reakció a glicin aminosavra.

A tapasztalat leírása. 2 ml 0,1% -os glicin-oldathoz, amelyet 10% -os lúgos oldat hozzáadásával 8-ra állítottunk be, 0,5 ml o-ftaldehid vizes oldatát adtuk hozzá. A reakcióelegy lassan élénkzöld színűvé válik. Néhány perc elteltével zöld csapadék esik ki.

Reakció a triptofánra. A triptofán, amely savas környezetben és aldehidekkel reagál, színes kondenzációs termékeket képez. Például glikoxilsavval (amely koncentrált ecetsav keveréke) a reakció az alábbi egyenlet szerint megy végbe:

Hasonló eljárás következik be és a triptofán formaldehiddel való reakciója.

Reakció Sakaguchi. Az arginin aminosavra adott reakció az arginin és az a-nafto közötti kölcsönhatáson alapul oxidálószer jelenlétében. A mechanizmus még nem teljesen tisztázott. Nyilvánvaló, hogy a reakciót az alábbi egyenlet szerint hajtjuk végre:

Mivel a kinon-iminszármazékok (ebben az esetben a nafto-kinon), amelyben az –NH– imino-csoport hidrogénatomja alkil- vagy arilcsoporttal helyettesített, mindig sárgás-vörös színekkel színeződik, az oldat narancssárga-vörös színe a Sakaguchi-reakció megjelenésének köszönhető. Naftoquinone imine. Nem kizárt azonban, hogy az arginin-maradék NH-csoport további oxidációja következtében még bonyolultabb vegyület képződik, és az a-naftol benzolmagja további oxidációja következtében:

A tapasztalat leírása. A csőbe 2 ml 0,01% -os arginin-oldatot öntünk, majd 2 ml 10% -os nátrium-hidroxid-oldatot és néhány csepp 0,2% -os alkohol-oldatot adunk hozzá. A kémcsövek tartalmát jól összekeverjük, 0,5 ml hipobromit oldatot öntünk és ismét összekeverjük. Azonnal hozzáadunk 1 ml 40% -os karbamid-oldatot a gyorsan fejlődő narancssárga-vörös festés stabilizálásához.

Biuret reakció - színreakcióként a fehérjékhez. Egy lúgos közegben réz (II) sók jelenlétében lila színt adnak. A szín a réz (II) komplex vegyület képződéséből adódik, ami a fehérjékre jellemző "-CO-NH-" peptidcsoportnak köszönhető. Ezt a reakciót karbamidszármazékból, biuretből kapta meg, amely akkor keletkezik, amikor a karbamidot ammónia eltávolításával melegítjük:

A fehérjék és a biuret mellett ugyanaz a festés más vegyületeket is tartalmaz, amelyek a következő csoportot tartalmazzák: amidok, karbonsavak imidjei, valamint a molekula-CS-NH- vagy = CH-NH-csoportot tartalmazó vegyületek. A fehérjék, néhány aminosav, peptid, biuret és közepes pepton szintén reakciót ad.

A különböző peptidekkel végzett biuret reakcióval kapott komplex színe némileg eltérő, és a peptidlánc hosszától függ. Négy aminosav-maradékot tartalmazó peptidek és a fentiekből álló vörösvörös komplexek, a tripeptidek lila, a dipeptidek kékek.

A polipeptid keton formája

polipeptid enol formája

Amikor egy polipeptid kölcsönhatásba lép Cu (OH) -val₂ egy komplex képződik, amelynek szerkezete a következőképpen látható:

http://poznayka.org/s69766t1.html

Tapasztalat 1. Színezzen reakciót a glicinnel rézionokkal.

Reagensek: 1% glicin-oldat, 1% réz (II) -szulfát-oldat,

1% lúgos oldat.

A munka előrehaladása. Helyezzünk 2 csepp réz-sóoldatot egy kémcsőbe, 10-15 csepp glicint (amino-ecetsav), adjunk hozzá 4-5 csepp lúgot.

Jegyezze fel a kapott vegyület színét.

2. A glicin reakciója formalinnal:

5 csepp glicinoldatot (ω = 1%) helyezzünk egy kémcsőbe, és adjunk hozzá egy csepp metil-száj indikátort. Figyelje meg a sárga festés megjelenését. Az oldatban lévő reakcióközeg alapján. A cső tartalmához 5 csepp formalint adunk. Nézze meg a színváltozás jelzőjét. Befejezi (melyik funkcionális csoport jelenléte megerősíti ezt a reakciót). Adja meg a reakcióegyenletet.

3. Xantoprotein reakció:

A tiszta csövekbe 0,5 ml tojásfehérje, albumin, zselatin és kazein oldatot helyezünk. Minden csőbe 0,5 ml tömény salétromsavoldatot adunk. Fűtött. A csövek lehűtése után 0,5 ml nátrium-hidroxid-oldatot adunk hozzá.

4. A kéntartalmú aminosavakkal szembeni rossz reakció:

Négy csőben 0,5 ml tojásfehérje, albumin, zselatin és kazein oldatát helyezzük. Minden csőhöz adjunk hozzá 1 ml nátrium-hidroxid oldatot, keverjük össze. Melegítsük fel. Adjunk hozzá 0,5 ml ólom-acetát oldatot (ω (Pb (CH 2COOH))₂) = 10%). Melegítsük fel forrásig. Jegyezze meg a megfigyeléseket.

Házi feladat.

1. Adja meg a négy proteinogén aminosav képleteit.

2. Adja meg a két nem proteinogén aminosav formuláját.

3. Adja meg a három esszenciális aminosav képletét:

4. Adja meg a három esszenciális aminosav képletét:

5. Tegyünk példákat az aminosavak ampholytes tulajdonságait megerősítő reakciók egyenleteire:

6. A vizes oldat pH-jától függően írja le az aminosavak létezésének formáit.

7. Adjon példákat hidrofób oldalláncokkal rendelkező aminosavakra.

8. Írja be a reakcióegyenleteket: a) tirozinra (Millon reakció),

b) arginin (Sakaguchi reakció).

Téma: A fehérjék szerkezete és tulajdonságai.

4. lecke

Dátum: _________

Információs blokk (a tanár utasításai szerint):

Lab munka.

Minőségi reakció a peptidkötésre. A fehérje mennyiségi meghatározása.

Célkitűzés: a fehérjék tulajdonságainak tanulmányozása a szerkezetük miatt. A munka lényege: a peptidkötés jelenlétét igazoló kísérletek elvégzése, hogy meghatározzuk a vizsgálati oldat fehérjetartalmát.

Reagensek: tojásfehérje oldatok, 1% réz (II) -szulfát-oldat,

10% lúgoldat.

1. Biuret reakció peptidkötésre:

Négy csövet helyezünk 1 ml tojásfehérje oldatba. Minden csőbe 1 ml nátrium-hidroxid-oldatot (c (NaOH) = 1 mol / l) adunk. A cső falán 2 ml réz (II) -szulfát-oldatot. A vörös-lila szín megjelenése figyelhető meg.

2. A fehérje mennyiségi meghatározása oldatban:

A módszer biuret reakción alapul! Kalibrációs gráf kiépítéséhez egy pontosan ismert tömegarányú (ω = 1,00%) fehérjeoldatból négy oldatot állítunk elő a szekvenciális hígítás módszerével. 1,00 ml fehérjeoldatokat öt csőbe helyezünk: négy csőben - kalibrációs gráf kialakítására szolgáló oldatok, az ötödik csőben - a vizsgálati oldat. A csövek tartalmát üvegbotokkal keverjük és szobahőmérsékleten 20 percig hagyjuk. Az oldat optikai sűrűségét PE-5300 V spektrofotométerrel mérjük, majd standard oldatot készítünk 1,00 ml desztillált víz, 1,00 ml nátrium-hidroxid-oldat és 0,10 ml réz (II) -szulfát-oldat keverésével. A fényszűrő hullámhossza 540 nm. Jegyezze fel a mérési eredményeket.

. (ez a munka nem szükséges, a táblázat bemutatja a kalibrációs gráf elkészítéséhez szükséges adatokat.) 2 ml vizsgálati oldatot tegyünk egy tiszta kémcsőben, adjunk hozzá 2,00 ml nátrium-hidroxid-oldatot és 0,20 ml réz (II) -szulfát-oldatot. A csövek tartalmát üvegrúddal keverjük és szobahőmérsékleten 15 percig hagyjuk. Mérjük meg az oldat optikai sűrűségét egy PE - 5300 V spektrofotométerrel. A fényszűrő hullámhossza -

540 nm. Hozzon létre egy D = f (ω,%) kalibrációs gráfot (a grafikonpapíron) a táblázatban szereplő kész adatokból, és határozza meg a fehérje tömegarányát a vizsgálati oldatban. A vizsgálati oldat fehérjetartalmának megállapítása.

http://infopedia.su/13x2253.html

Kémiai tulajdonságok - Aminosavak

Munkainformációk

Feladatfájl letöltése

Segített a munka? Link megosztása

KÉMIAI TULAJDONSÁGOK - AMIN-savak

Aminosavak, mint heterofunkciós vegyületek, mind a karboxilcsoportra, mind a

aminocsoportok. Az α-aminosavak egyes kémiai tulajdonságai a radikális funkciós csoportok jelenlétének köszönhetők.

Komplex tulajdonságok. Az aminosavak, mint polidentát ligandok, a hagyományos sók mellett képesek kelát komplexeket képezni d-fém kationokkal. Ebben az esetben mind az aminosav, mind az aminosavak ionizált karboxilcsoportja elektronpárok donorjaként működik. Például az összes amino-sav és a frissen elkészített Cu (OH) 2 oldat oldható elektroneutrális komplexet képez, amely világos kék színnel van festve:

Ezt a reakciót nem specifikus módszerként is alkalmazhatjuk az a-aminosavak kimutatására.

2H3N-CH-COO + Cu (OH) 2

R NH2O
Cu + 2 H2O
O

A további proton donor vagy proton akceptor csoportokat tartalmazó savas és bázikus α-aminosavak aktívabb ligandumok, mint a semleges aminosavak. A cisztein és a hisztidin a biometálok kationjaival való komplexáció szempontjából különleges aktivitást mutat, és a kemény és lágy reagensek elméletével összhangban, mivel könnyen polarizált („lágy”) csoportokat tartalmaznak, tiol és imidazol. Ezek a csoportok meglehetősen erős kötéseket alkotnak a biometálok „puha” kationjaival. A szubsztituens aktív csoportjai miatt ezeknek az aminosavaknak a nagy komplexképző képessége megmarad a peptidekben és azok fehérjékben.

Az aminosavak komplexképzése rendkívül fontos szerepet játszik a fém ligandum homeosztázisának fenntartásában, valamint a kelátterápiában. Az aminosavak komplexképző tulajdonságainak ismerete lehetővé teszi a peptidek és fehérjék releváns tulajdonságainak megértését.

Az N-acil-származékok képződése. Ha az aminosavat anhidridekkel vagy karbonsav-anhidridekkel acilezzük, olyan vegyületeket kapunk, amelyek N-
acilszármazékok vagy N-szubsztituált amidok.
CH-COOH + CHCO NaOH, H20 CH2-COOH

2 6,5CI-NClCl

2N
NH-C
glicin C6H5
N-benzoil-glicint
Az N-acil-származékok hidrolízise során a kezdeti a-aminosavak képződnek. Ezért az acilezési reakciót széles körben használják az aminocsoport védelmére.

CHCOOH + (CHCO) O 25 ° C CH2-COOH

2 3 2 -CH3COOHO
NH2
NH-CCH3
glicin
N-acetii-glicin

O
Az aminosavak amino-csoportjának védelme fontos a peptidek szintézisében. Azonban a védőcsoport savas hidrolízissel történő eltávolításának szokásos módszere elfogadhatatlan, mivel a peptidkötés egyidejű hasítása a szintetizált peptid molekulájában fennáll. Ez speciális módszereket igényel. A karbobenzoxi-védelmet széles körben alkalmazzák, amelyben a benzil-klór-formiát (karbobenzoxi-klorid vagy benzil-éter acilezőszerként szolgál).
kloroformos sav).
O

20 ° C H-CH-O-C
C
CHCHOH + Cl-C-Cl

6,52-HCI 5 2CI
benzil-foszgén
benzil-klór-formiát-alkohol

C6H5CH2-O-CCl + CH2-COOH-HCl
benzil-klór-formiát NH2-glicin

O N-benzil-oxi-karbonil-glicin
(N-védett glicin)

A terc-butoxi-karbonil-csoportot (Boc) védőcsoportként is alkalmazzuk. Ebben az esetben, mint
Az acilezőszer terc-butoxi-karboxazid.
O
(CH) C-O-C +
CHCOOH CH2-COOH

3 3 2 -HN3O
N3
NH2
NH-C
glicin-terc-butoxi-
karboxazid O-C (CH)
(Boc-N3) 3 3
N-terc-butoxi-karbonil-

glicin
(N-védett glicin)

A védő karbobenzoxi-csoportot (benzil-oxi-karbonil-csoport) eltávolítjuk anélkül, hogy a katalitikus hidrogenolízis során a peptidkötéseket megszakítanánk, azaz a katalizátort alkalmazzuk. hidrogén hatására palládium jelenlétében

katalizátor szokásos hőmérsékleten. Ezen túlmenően ezen védőcsoport eltávolítása hidrogén-bromid és trifluor-ecetsavak keverékével történhet melegítés nélkül.

H2, Pd / CaCO3 + CH3

CH2CHOO
O-CO 2
NH3
C6H5CH2-O-C CH2Br

NH HBr / CF3COOH
CH2COOH +
CH2

A kötések kötődésének könnyűsége a hidrogenolízis során a kapott közbenső részecske, a benzil-kation termodinamikai stabilitásának köszönhető. Ugyanez az elv, azaz a védőcsoport könnyű hasítása a terc-butoxi-karboxazid esetében alkalmazott termodinamikailag stabil közbenső részecske kialakulása miatt.

A védő t-butoxi-karbonil-csoportot (Boc-csoport) könnyen lehűtjük anélkül, hogy 1N hatással lenne. hidrogén-klorid oldatot vízmentes metanolban vagy trifluor-ecetsavban. Közbenső részecske formájában viszonylag stabil terc-butilezés képződik, amely ezután 2-metil-propén (izobutilén) -vá alakul.

CH-COOH HCI, CH3OH CHCOOH + CH-C = CH
2 O –CO2 2 3 2

NH3CICH3
NH-C
O-C (CH3) 3

Az észterek képződése. Aminosavak észterezésével alkoholokkal sav katalizátor jelenlétében (hidrogén-klorid gáz), hidroklorid formában levő észtereket kapunk jó hozammal. A szabad észterek izolálásához a reakcióelegyet gázhalmazállapotú ammóniával vagy trietil-aminnal kezeljük (minden reagensnek vízmentesnek kell lennie az észter hidrolízise elkerülése érdekében).

CH2-COOH C 2H 5OH CH2COOC2H5
HCl (száraz), 25 ° C

NH2NHCl
3
glicin

(C2H5) 3N CH2-COOC2H5- (C2H5) 3N HCI NH2

glicin-etil-észter

Aminosavak benzil-észtereinek előállítására katalizátorként benzolszulfonsavat használunk. A reakció során a keletkező vizet ledesztilláljuk.
CHSOH

H3N-CH2COO + C6H5CH2OH 6-H52O3
glicin-benzil
alkohol
H3N-CH2COOCH2C6H5C6H5SO3

A β-aminosav-észterek nem rendelkeznek dipoláris szerkezettel, ezért a kiindulási savakkal ellentétben szerves oldószerben oldódnak és illékonyak. Tehát a glicin egy kristályos anyag, amelynek magas olvadáspontja 292 ° C, és metil-étere 130 ° C forráspontú folyadék. Első desztilláció

A metil-aminosavakat E. Fisher gyártotta (1901). Ettől a ponttól kezdve az éteres módszer bevezette az a-aminosavak elválasztásának gyakorlatát, amely megnyitotta az utat a fehérje hidrolizátumok elemzéséhez. Az észterek - aminosavak elemzése gáz-folyadék kromatográfiával történik.

A savhalogenidek képződése. Amikor eljársz -
védett aminocsoporttal rendelkező aminosavak, tionil-klorid (SOCl2) vagy foszfor-oxi-klorid (POCl3) α-aminosav-kloridok:

42
O
C6H5CH2-O-C-NH-CH2-C + SO2 + HCl
O cl

A savhalogenidekké való átalakítást a peptidek szintézisében használtuk fel

az a-aminosavak karboxilcsoportjának aktiválási eljárása. A savhalogenidek nagy reaktivitása miatt azonban az acilezési reakció szelektivitása alacsony volt (sok melléktermék képződött), ezért a megfelelőbb aktiválási módszer a sav anhidriddé történő átalakítása volt. Az anhidridek enyhén alacsonyabb acilező képességgel rendelkeznek, de nagyobb szelektivitással rendelkeznek, mint a halogenidek.

A peptidek szintézisében az a-aminosavak vegyes anhidridjét használjuk

és az etil-klór-formiát, amelyet az interakció véd

az aminosav aminocsoportja etil-klór-formiáttal. O
C6H5CH2-O-C-NH-CH2-COOH + C2H5-O-C

OCIN-benzil-oxi-karbonil-glicin-etil-klór-karbonát

N-benzil-oxi-karbonil-glicin és etil-karbonát vegyes anhidridje

N-alkil-szubsztituált aminosavak képződése.

Az aminocsoport monoalkilezése nem mindig szelektív. E reakció szelektivitása az alkilezőszer jellegétől függ. A reakcióban általában mono- és dialkil-szubsztituált aminosavak keverékét képezzük. Továbbá, ha halogénalkán felesleget alkalmazunk, a dialkil-szubsztituált aminosavat tovább alkilezzük, hogy megkapjuk a trialkil-szubsztituált aminosavat. Az aminosavak nitrogénatomján az alkilezés reakciója hozzájárul
lúgos közeg.
H2N-CH2COOK CH3I, KOH CH3NH-CH2COOK -KI, -H20

CH3I, KOH (CH3) 2N-CH2COOK CH3I, KOH
-KI, -H2O
-KI, -HO
2

A kapott vegyületnek fix bipoláris ionos szerkezete van, és aminosav-betainnak, glicin esetében pedig egyszerűen betainnak nevezik. A betainban a nitrogénatomnak pozitív töltése van, ezért a betain egy másik vegyület nukleofil centrumának egy metilcsoportjának forrása lehet, azaz a szubsztituensek egyike lehet. metilezőszer. A szervezetben a transzmetilezés a betain alkalmazásával megy végbe, például a homocisztein alkilezése metioninná:

betain CH2CH2SH homocisztein

(CH3) 2N-CH2COOK + H3N-CH-COO
CH2CH2SCH3

Káliumsó, metionin, N, N-dimetil-glicin

Schiff-ok megalakulása. Az interakcióban -

aminosavak az aldehidekkel, amelyek imineket képeznek (bázisok)
Schiff) karbinolaminok képződésével. OH
NH
CH-R
H2N-CH-COOH + R-CH = O R-
CH-COOH
-H2O

-aminosav aldehid
N = CH-R

helyettesített imin (Schiff bázis)

A gyengén lúgos közegben (pH 7) lévő formaldehidek könnyen reagálnak a szabad aminocsoportot tartalmazó α-aminosavak nukleofil addíciójával. Ennek eredményeként viszonylag stabil karbinolaminok, N-metilol-származékok képződnek. A formaldehid feleslegével az N, N-dimetilolból származó aminosav keletkezik:

H2N-CH-COOK + H2C = O KOH HOCH2HN -CH-COOK

R
R
Aminosav N-metilol-származéka

HOCH2
H2C = O N-CH-COOK
KOH HOCH2 R
Aminosav N, N-dimetilol-származéka

Ilyen aminosavszármazékoknál a nitrogénatom bázikussága erős

csökken az elektronkivonó szubsztituensek miatt. A reakció - a formaldehiddel képzett aminosavak kvantitatívak

α-aminosavak meghatározása a formol titrálási módszerrel (Sørensen módszer), ahol az alkáliát használják titrálószerként (fenolftalein indikátor). Az aminosavak aminosavak vagy fehérjék formaldehiddel való reagáltatásának magas hajlama a fehérjék irreverzibilis denaturációjához vezet. Ez magyarázza a formaldehid magas toxicitását és sterilizáló képességét.

Redox reakció. -Amino-savak különböző redox-reakciókba lépnek, amelyek a szénatomok oxidációs állapotának változásával járnak. Ezek a reakciók intramolekulárisan és intermolekulárisan jelentkeznek.

Az összes természetes α-aminosav közül a cisztein, amelyet a tiolcsoport (-SH) kénatomja könnyen oxidál egy diszulfid (-S-S-) csoportot tartalmazó ciszteinre, különösen érzékeny az oxidálószerek hatására.

-2e, -2H
NH-CH-COO S-CH2CH (NH3) COO

3
+2e, + H
CH2-SH
S-CH2CH (NH3) COO

cisztein cisztin
(redukálószer) (konjugált oxidálószer)

A cisztein és a cisztin egy konjugált redoxpárot képez, amelyre tiol-diszulfid-egyensúlyt mutatunk. Ezért a cisztein hatékony antioxidáns, amely a tiolcsoport redukáló tulajdonságai miatt erős oxidálószerekkel szemben védőfunkciókat hajt végre. A cisztein volt az első hatóanyag, amely antiradiaciós hatást mutatott, ami csökkentette a sugárzás károsodásának mértékét és növelte a betegek túlélését.

Biológiailag fontos kémiai reakciók. Számos fontos

Az α-aminosavak kémiai transzformációi, amelyeket a szervezetben különböző enzimek hatására hajtanak végre, egy közös mechanizmussal rendelkeznek, mivel ugyanaz a koenzim-piridoxál-foszfát, amely kovalens kötéssel szilárdan kötődik az enzimhez.

A piridoxál-foszfát és az α-aminosavak az aldimin I-t alkotják az aldehidcsoport és az a-aminosav aminocsoportjának reagáltatásával.
Az aldimin I-ben a konjugált rendszer elektron-sűrűsége a protonált piridin-nitrogénatomra tolódik el, ami miatt
az aminosav szénatomjának kötéseinek erős polarizációja. Attól függően, hogy e három kötés közül melyik vesz részt a további reakcióban (melyet az enzim jellege határoz meg), transzamináció, dekarboxilezés, elimináció, racemizáció, aldol hasítás, stb. Végrehajtható. A folyamatok mindegyikét az aldimin I. képződésének szakaszában hajtják végre.

O CH = O
O-POCH2OH
NH2-CH-COO + O
RN CH3
H
piridoxál-foszfát

R-CH-COOH
O
HCNH
O-POCH2
O
O
N CH3H

Dekarboxiíezzük. A dekarboxilezési eljárás - aminosavak biogén aminok kialakulásához vezet.

dekarboxiláz +
NH-CH-COO + piridoxál-foszfát R-CH-NH + CO

R amin
-aminosav
-Az aminosavak tartalmazzák az elektron-akceptor-aminocsoportot (pontosabban egy protonált aminocsoportot [-NH3] +) a karboxilcsoporthoz képest, ami magyarázza azok dekarboxilát-képességét.

Laboratóriumi körülmények között ez a reakció akkor folyik, ha melegszik - aminosavak szén-dioxid-szennyező anyagok, például bárium-hidroxid Ba (OH) 2 jelenlétében.
NH2-C-COOH + Ba (OH) 2 t oC R-CH2-NH2 + BaCO3
-H2O
R

Dekarboxilezés a szervezetben. Az aminosavak dekarboxilezése viszonylag könnyen előfordul az állatok és növények szövetében, de különösen jellemző a mikroorganizmusokra. A folyamat dekarboxiláz enzimek és piridoxál-foszfát koenzim részvételével történik. Ezt a reakciót a 2. T

aldimin I poláris kötés a szénatom és a karboxilátcsoport között. A proton hozzáadásából adódó közbenső "kinoid" forma aldiminná alakul át, melynek eredményeként a hidrolízis során piridoxális foszfátot és biogén amint kapunk.

Elemanalízis a C18H4N3O2 képlet alapján: számított: C% HHCNH
P OCH2OPOCH2O
+H
N-CO 2.. CH3
CH3N
H H
aldimin I "quinoid" forma

A szervezetben lévő biogén aminok fontos biológiai tulajdonságokat mutatnak

funkciót. Például a glutaminsav dekarboxilezése során keletkező α-aminovajsav (GABA) neurotranszmitter, és részt vesz az agyban előforduló metabolikus folyamatokban. Az orvosi gyakorlatban ez a sav, a hamalon, vagy az Aminalon, a neuropszichiátriai betegségek kezelésére szolgál. Számos természetes α-aminosav - szerin, cisztein, lizin, triptofán, aszparaginsav stb. - dekarboxilezése nagy biológiai jelentőséggel bír.

R-CH 2
H CNHCO
H ó
P OCH2O P OCH
2
H2O +
N CH3
N CH3
H H
aldimin Ia piridoxál-foszfát
+ R-CH 2-NH2

Transzaminálás. Ez az α-aminosav bioszintézis fő útja.

-oxo-savakból. Az aminocsoport donorja a sejtekben jelenlévő aminosav elegendő mennyiségű vagy feleslegben van, és az
akceptor - oxoav. -Amino sav -

oxo-sav és az α-hidroxisav - aminosavban, a megfelelő gyökök szerkezetével. Ennek eredményeként a transzamináció az aminocsoportok és az oxo-csoportok váltakozásának reverzibilis folyamata. Az ilyen reakció egyik példája az L-glutaminsav előállítása a-oxoglutarinsavból. A donor p-aminosav lehet például L-aszparaginsav.

donor-aminosav-akceptor-oxonsav

HOOCCH2 CHCOOH + HOOCCH2CH2CCOOH

O
NH2
L-aszparaginsav-2-oxoglutarinsav
sav

transzamiláz + akceptor-oxo-sav
+ piridoxál-foszfát HOOCCH2 CCOOH +

Oh
2-oxo-borostyánkősav

donor aminosav
+ HOOCCH2CH2CHCOOH
NH2

A transzaminációs reakció egy intermolekuláris redox eljárás, amely az aminosavak és a karbonilcsoportok közötti konverzióra redukálódik a piridoxális foszfát koenzim és transzamináz enzimek hatására, amit aminotranszferázoknak is hívnak. Ez a reakció nemcsak az aminosavak megsemmisítésére szolgál, hanem a bioszintézisükhöz is, vagyis annak szabályozása révén.

az α-aminosavak tartalma a sejtekben.
A piridoxál-foszfát koenzim a donor α-aminosavból az aminosav átvitele a akceptor-a-oxo-savra, a közbenső áttéréssel a piridoxamin-foszfát-formára, azaz a transzfer. a piridoxál-foszfát akceptorként viselkedik, és a piridoxamin-foszfát amino-donorként működik. A transzaminálási folyamat az aldimin I ezt követő transzformációjával történik a szénatom és a hidrogénatom közötti poláris kötés részvételével. A CH-sav jelenléte

a középpont és ennek megfelelően a mozgó hidrogénatom megteremti a feltételeket számos prototróp tautomer transzformáció előfordulására.

Az Aldimin I, amely a H + protont hasítja, áthalad a „kinoid” közbenső formába, amelyben a proton hozzáadásával helyreállítható aromás tulajdonság, és a ketimin képződik. A ketimin hidrolízisével piridoxamin-foszfátot és a-oxo-savat kapunk.

A piridoxamin-foszfát képes kölcsönhatásba lépni az akceptor α-hidroxil-savval ellentétes irányban, aminek eredményeként az α-aminosav keletkezik, és a piridoxál-foszfát „visszaadódik”.

R-CH-COOH R-C-CHOOH
HCNH HCNH
P-OCH 2O-H P-OCH 2O + H
N..
CH3NCH3
H H
aldimin I "quinoid" forma
R-C-CHOOH
H2CNH H2C NH2
P-OCHO-OCH 2OH
2 H2O +
N
N CH3CH3
H H
ketimin-piridoxamin-foszfát

P jelentése foszforsav PO32-

A transzaminációs reakció a kapcsolat

a fehérjék (aminosavak) és a szénhidrátok (- oxo-savak) metabolizmusának folyamatai. Ez a reakció kiküszöböli az egyén feleslegét

-aminosavak, így a sejtekben a β-aminosavak tartalma szabályozott.

Kiküszöböléséről. Ez az eljárás az α-aminosavakra jellemző,

amely a karboxilcsoporthoz képest elektron-elválasztó funkciós csoportokat, például hidroxil- vagy tiolcsoportot tartalmaz. Amikor piridoxál-foszfát és a megfelelő enzim hatására hasítják őket, közbenső

reaktív aminosavak. Ez utóbbi könnyen transzformálódik tautomer α-aminosavakká, amelyek az imincsoport hidratációs reakciójának eredményeként α-hidroxisavakká alakulnak.

X NH2 NH2
R-CH-CH-COOH R-CH = C-COOH tautomerizmus
-HX

-szubsztituált
-aminosav
(X = OH, SH; R = H, CH3

NH H2O NH2
R-CH-C-COOH R-CH2-C-COOH
-NH3

Aldol hasítás. Ez a folyamat -

aminosavak, amelyek a helyzetben hidroxilcsoportot tartalmaznak. Például a szerin glicin és formaldehid képződésére hasad (ez utóbbi szabad formában nem szabadul fel, de azonnal egy másik koenzimhez, tetrahidrofolsavhoz kötődik). Ez a reakció nagy jelentőséggel bír egy szénhidrogén-fragmens (hidroxi-metil-csoport formájában) forrásaként, amelyet később számos vegyület, köztük metionin és purin-nukleotidok szintézisében is tartalmaz.

HO-CH2-CH-COOH3N-CH2-COO + H2C = O
NH4
glicin-formaldehid
szerin
Ennek a reakciónak az alapja az aldimin I-nek a -

és a szénatomok az aminosav maradékában.

-Az aminosavak aktívan részt vesznek számos metabolikus reakcióban, amelyek számos koenzimet tartalmaznak.

Például β-oxo-savakká alakíthatók nem csak transzaminálással, hanem oxidatív dezaminálással is.

Oxidatív dezamináció. A folyamat a dehidrogenáz és a koenzim NAD + vagy NADP + enzimek részvételével hajtható végre. Például az L-glutamin oxidatív dezaminációjában

sav képződik -oxoglutarinsav. A reakció első szakaszában

a glutaminsav dehidrogénezését (oxidációját) i-aminoglutársavvá végezzük.

RO OH CONH2
N o o o

N CH 2O-P-O-P-OCH 2O N

A második szakaszban hidrolízis történik, ami α-oxoglutársavat és ammóniát eredményez. A színpad hidrolízise az enzim részvétele nélkül megy végbe. A kapott ammóniát a karbamid-ciklus tartalmazza.
Az ellenkező irányban a reakció reduktív

-oxonsavak aminálása. Például, mindig szerepel a sejtekben az oxoglutarinsav (a szénhidrát anyagcsere terméke).
ezt az utat L-glutaminsavvá alakítja át.
NH2 OVER +
HOOCCH2CH2CHCOOH
L-glutaminsav NADH, H +
NH
HOOCCH2CH2CCOOH H2O

O
HOOCCH2CH2CCOOH + NH3

-oxoglutarinsav
Laboratóriumi körülmények között a dezaminálást nitrogénnel végezzük

sav. Ebben az esetben a megfelelő α-hidroxi-sav képződik és nitrogéngáz szabadul fel, amelynek térfogatát a mennyiség meghatározására használják.

reagált a-aminosavak (Van-Slyka módszer). Ezért ezt a reakciót az aminosavak mennyiségi meghatározására használjuk aminosavakban, valamint fehérjékben és ezek bomlástermékeiben.

R-CH-COOH + NaN02, HCI-R-CH-COOH + N + HO
HNO2 HO 2 2
NH2
-aminosav - hidroxisav
A közelmúltban egy új enzimet, a NO-szintetázt fedeztek fel, amelynek hatására az arginin és a NADPH (H) molekuláris oxigénnel történő oxidációja során nitrogén (II) -dioxidot és cictulin-ot képeznek.

A kapott (II) nitrogén-monoxidot gyorsan alkalmazzák a szervezet immunrendszerében a xenobiotikumok kiküszöbölésére, valamint a vérnyomás szabályozására a véredények izmainak megnyugtatásával.

NH = CNH (CH2) 3CHCOOH + NADP (H) + 3O2 + H +
NH2 NH2

NO szintetáz O = CNH (CH) CHCOOH + NADF +
-2H 2O, -2NO 2 3

NH2 NH2
citrullin

A kémiai transzformációk a szervezetben az általános vagy az aminosavak túlnyomó többségével együtt haladnak

számos reakció az egyes α-aminosavakkal, például a fenilalanin hidroxilezésével, a metionint magában foglaló transzmetilezési eljárással.

Az anyagcsere során az aszparaginsav ammónia-liáz hatására az aszparaginsav könnyen reagál intramolekuláris deaminációra, aminek következtében ammónium-fumarát keletkezik.

H3N-CH-COO-aszpartát-ammónia-liáz H-C-COO

CH-COOH-CH-COO NH4
ammónium-fumarát-aszpartát

A reakció reverzibilis, és a testben lévő aszparaginsav tartalmának szabályozására szolgál. A mikrobiológiai iparban az ammónium-fumarátot L-aszparaginsav szintetizálására használják aszpartát-ammónia-liázt tartalmazó E. coli sejtek segítségével.

Kapcsolódás a hőhöz. Fűtéskor az aminosavakat ciklikus amidokká alakítjuk, melyeket diketopiperazinoknak neveznek. Például az alanin ciklizálódik 3,6-dimetil-2,5-diketopiperazinná.

NH-CH-CH3O
1 6-ig
H OH HN 5
H 2NH
HO

C-CH-NHO 3 4
O CH3
alanin-3,6-dimetil-2,5-diketo
-piperazint

A 3,6-dimetil-2,5-diketopiperazinban lévő egyik peptidkötés hidrolízisével könnyen megkapjuk a megfelelő dipeptidet.

Minőségi reakciók. Az aminosavak és fehérjék kémiai sajátossága számos minőségi (általában szín) reakció alkalmazása. Jelenleg, amikor a kutatást fizikai-kémiai módszerekkel végzik, sok minőségi reakciót alkalmaznak az aminosavak kimutatására a kromatográfiás elemzés során.

Az aminosavak általános minőségi reakciója a ninhidrinnel való reakció. Ez az aminosavak ninhidrinnel történő oxidációs reakciója, majd azok dezaminálása és dekarboxilezése, valamint egy ninhidrin festék képződése a vízben oldott oxigén részvételével.

A ninhidrin-reakció terméke kék-lila színű, amelyet aminosavak vizuális kimutatására használnak kromatogramokon (papíron, vékony rétegben), valamint spektrofotometriás meghatározással aminosav-elemzőkkel (a termék elnyeli a fényt az 550-570 nm tartományban).

O OH o
C C
+ H2N-CH-COOH-CO 2OH
C OHRC
-NH3O
O-R-CH = O
ninhidrines
diketooksigidrinden
(hidratáló forma
1,2,3-indantriona)
O HO o
C C
COH + NH3 + C3H2O
aminosavból

O o
OO OH O
C N = C = N = CC
C C
C C C
O o o o

O NH4 o
NH3C
C N = C
C C
O o

Aromás és heterociklusos a-aminosavak kimutatására a xantoprotein reakciót (fenilalaninra, tirozinra, hisztidinre, triptofánra adott reakció) alkalmazzuk. Például, a koncentrált salétromsav tirozin hatására a nitrocsoport sárga színű. Ha az alkáliát hozzáadjuk, a szín narancssárga lesz a fenolos hidroxilcsoport ionizációja és az anionnak a konjugációhoz való hozzájárulása miatt.
CH-COOH HNO3O2N
HO HO CH-COOH

tirazin (sárga szín)

NaOH, CH-COONa
NH2

(narancssárga szín)
A ciszteint több, a benne lévő merkapto-csoport reakcióképességén alapuló kvalitatív reakciókkal detektáljuk. Például amikor egy ólom-acetátot tartalmazó fehérjeoldatot alkalikus közegben melegítünk, fekete ólom-tiolát csapadék képződik, amely
a cisztein fehérjékben való jelenlétét jelzi.
SH
(HOOCCHCH2S) 2Pb
2CH CHCOOH + (CH COO) Pb

2 3 2 -2CHCHOH
3 NH2
NH2
A triptofánt para-dimetil-amino-benzaldehiddel reagáltatjuk kénsav közegben vörös-lila festéssel (Ehrlich-reakció). Ezt a reakciót a triptofán fehérjebontási termékekben történő számszerűsítésére használjuk.

http://www.sesiya.ru/staty/biotehnologiya/1420-himicheskie-svoystva---aminokislot/